jueves, 22 de octubre de 2015



DETERMINACIO DE LIPIDOS POR METODOS CUANTITATIVOS DE HARINAS INDUSTRIALES

Resumen
Los lípidos son suministros de ácidos grasos esenciales y de vitaminas liposolubles y formación metabólica de acetil coenzima. Este laboratorio se hace con el fin  de describir los métodos de extracción de lípidos en el laboratorio de bioquímica con el fin de incentivar a los estudiantes hacia el estudio de una manera más práctica.

Abstract

Lipids are supplies essential fatty acids and fat soluble vitamins and metabolic formation of acetyl coenzyme. This laboratory is done in order to describe the lipid extraction methods in the biochemistry laboratory in order to encourage students to study in a more practical way.

Introducción
Los lípidos son un grupo heterogéneo de sustancia que están en los organismos vivos, también son biomoléculas orgánicas formadas principalmente por carbono e hidrogeno y generalmente por oxígeno. Además pueden contener también fosforo, nitrógeno y azufre. Los lípidos no son hidrosolubles, no se disuelven en agua, estos se disuelven en disolventes orgánicos como el alcohol y el éter. Los lípidos también  constituyen el material fundamental de todas las membranas celulares en las que aportan la bicapa de fosfolípidos.

Metodología

Método Soxhlet
El método soxhlet se utiliza para la extracción de lípidos en este caso presentes en la harina de maíz para esta prueba se pesó dicha harina y se colocó sobre el papel filtro,  se envolvió en forma de dedal, a su vez se midió la cetona y se adiciono en el balón de destilación. Luego se introdujo en el tubo de extracción el dedal para armar el sistema y comenzar a calentar.
Cuando la cetona empieza a hervir los gases suben por el tubo lateral del sistema luego cae en fase liquida en el tubo de extracción y cuando llega a cierto nivel la cetona se descarga nuevamente al balón y el proceso se inicia de nuevo. Este procedimiento se realizó hasta conseguir  tres descargas y luego se retiró la muestra obtenida para calentar 45 minutos en la estufa.

Metodo casero

Para este ensayo se midió una cantidad de harina de arroz  y procedimos a realizar el montaje con un balón de destilación, un condensador y una manguera. Se procedió a calentar la mezcla con el fin de recuperar la cetona que se encuentra dentro de  esta, al alcanzar la temperatura de 48°C se pudo evidenciar la separación de los compuestos  dejando a un lado la grasa extraída.

Metodo Bligh Dyer

Se pesa la harina en un vaso precipitado, se  agrega el cloroformo y el alcohol etílico y luego se extrae utilizando un agitador magnético durante 10 minutos. En otro vaso precipitado se agrega el cloroformo y se mezcla durante 5 minutos, se agrega  agua y se vuelve a mezclar durante otros 5 minutos, sé vierte el líquido en una probeta graduada para que la extracción sea cuantitativa. Se deja reposar la mezcla de cloroformo y alcohol etílico hasta observar una completa separación de dos fases, se lee el volumen de la capa clorofórmica. Se retira la capa alcohol etílico y agua, por aspiración retirando también un pequeño volumen de la capa clorofórmica para asegurar la completa remoción de la capa superior. Posteriormente se adiciona la capa clorofórmica y se lleva a un recipiente, donde  se evapora el cloroformo a 40ºC en un baño maria y por último se lleva a una estufa a 105ºC durante 1 hora.


Análisis y Resultados

Método Soxhlet

Para obtener resultados de la grasa en la harina de maíz analizada, se determinó.
                              
W1: peso del papel  con la harina  antes del proceso
W2: peso del papel con la harina después del proceso
W1-w2 = peso del lípido graso
11.071-10.7173  = 0.3537
Peso del lípido: 0.3537

Análisis

Se encontró un  porcentaje muy  bajo de ácido graso en la harina de maíz  ya que se sabe  que es una  harina tratada industrialmente, o posiblemente sea un derivado de la harina de maíz muy similar a ella, pues  si comparamos el valor teórico de porcentaje de grasa en el mercado este se aleja considerablemente, según el contenido teórico la harina de maíz presenta un valor porcentual de grasa del 13%.




Método de casero

W1: Peso inicial de la harina de maiz con la muestra
W2: Peso de lo que se recuperó de la muestra
W1-w2 = peso del lípido graso
70 – 51: +- 19 

Análisis

Como vemos  no se cuantifico la cantidad de ácido graso en la muestra, pero se efectuó la recuperación de cetona, se concluye que hubo una recuperación de un 25% aproximadamente, esto debido a que el otro porcentaje se usó en el procedimiento, vemos un margen de error elevado debido a que  mucho del contenido de la cetona quedo en la muestra y en los instrumentos utilizados, se concluye  que es un método efectivo en la extracción de lípidos.
El procedimiento se basa en la afinidad que tiene el solvente para mezclarse con la muestra, en este caso como se trata de un solvente orgánico, este arrastrara todo lo que sea afín con él. Los lípidos se definen como un grupo heterogéneo de compuestos que son insolubles en agua pero solubles en disolventes orgánicos tales como el éter de petróleo, cloroformo, benceno o acetona aproximadamente.
Por otro lado el solvente, por la presencia de agua como refrigerante, condensa a causa de un intercambio de calor pasando del estado gaseoso al estado líquido aumentando gota a gota el nivel de solvente en sonde ocurre el contacto directo entre el solvente orgánico y la muestra , extrayendo los aceites o ácidos grasos que se encuentren presentes. Por ello y por el principio de presión de vapor hace que la continuidad de caída de las gotas aumente hasta llegar   hasta el balón que recupera el aceite obtenido

METODO BLIGH DYER

Determinación de lípido en base seca
Calculo del peso del lipido
Peso del crisol seco  (w1) : 48,6150
Peso crisol  más la muestra (w2) : 56.5211
W2-w1: 56.5211-48.6150: 7.961
Peso del lípido base seca: 7.961
Contenido de lípido en la muestra
Peso lípido extraído/ muestra original  *100
Peso muestra: 10.420
Lípido extraído: 7.961
Contenido del lípido: 76.40% en la muestra

Determinación de lípido en base húmeda
Calculo del peso del lípido
Peso del crisol   (w1): 48,4029
Peso crisol  más la muestra (w2): 56.5211
W2-w1: 56.5211-48.4029: 8.1182
Peso del lípido base seca: 8.1182
Contenido de lípido en la muestra
Peso lípido extraído/ muestra original  *100
Peso muestra: 10.420
Lípido extraído: 8.1182
Contenido del lípido: 78 %

Análisis
El material lipídico se encuentra en la fase no acuosa, mientras que el material no lipídico se encuentra en la fase acuosa, La centrifugación a 100 rpm  logro la separación de las fases, la fase superior, metano –agua  e inferior cloroformo lípidos. Se concluye que hay una mayor eficiencia en la muestra húmeda  debido a que la muestra posee un contenido mayor de agua y  es homogeneizado con una mezcla de cloroformo y metanol es una proporción tal que se forma un sistema de tres componentes líquidos No es un método muy cuantitativo y tiene un elevado margen de error para muestras secas.


Anexos

En esta imagen tenemos el montaje de destilación donde recuperamos el acetileno y obtenemos las grasa de esta mezcla.


Proceso de agitación de la harina por el método de Bligh Dyer.



Monataje del metodo de Sochlet.


Harina de maíz después de la extraccion.


Conclusiones

  •              La importancia del método de Soxhlen empleado radica en que es un método directo y el rendimiento obtenido es óptimo con respecto al uso del solvente. Es una operación importante en todos los procesos tecnológicos con la industria química.
  •             La harina de maíz que usamos tiene poco contenido de grasas porque ya es tratada industrialmente.
  •            El agua impide una extracción completa y eficiente si se emplean éter etílico o éter de petróleo como disolventes.






domingo, 18 de octubre de 2015



LABORATORIO DE CARBOHIDRATOS


Resumen:

Se realizó una práctica de laboratorio con el objetivo de reconocer cualitativamente un carbohidrato por medio de reacciones químicas específicas y al mismo tiempo identificar monosacáridos (pentosas y hexosas), polisacáridos, azucares reductores y azucares no reductores; logrando esto se efectuó diferentes pruebas como la reacción de lugol para determinar la presencia de 
almidón u otros polisacáridoS presentes en los alimentos tales como papa, manzana y zanahoria ; la reacción de fehling para la identificación y obtención de azucares reductores; la reacción de molisch que tiñe cualquier carbohidrato presente en las soluciones y por último se realizó la prueba de Seliwanoff que se usa para distinguir entre aldosas y cetosas. 

 ABSTRACT 

Laborator practice was realized by the aim to recognize qualitatively a carbohydrate by means of chemical specific reactions and at the same time to identify monosacáridos (pentosas and hexosas), polisacáridos, sweeten reducers and sweeten not reducers; achieving this different tests were effected as the reaction of lugol to determine the presence of starch or other present polisacáridos in the such food as dad, apple and carrot; the reaction of fehling for the identification and obtaining of sweeten reducers; the reaction of molisch that dyes any present carbohydrate in the solutions and finally there was realized Seliwanoff's test that is used to distinguish between aldosas and cetosas.

INTRODUCCIÓN

Los hidratos de carbono están formados por carbono (C), hidrógeno (H) y oxígeno (O) con la fórmula general (CH2O)n. Los carbohidratos incluyen azúcares, almidones, celulosa, y muchos otros compuestos que se encuentran en los organismos vivientes. Estos se pueden encontrar en azúcares simples, se denominan monosacáridos los  azúcares simples porque pueden combinarse para formar carbohidratos más complejos. Los carbohidratos con dos azúcares simples se llaman disacáridos, los que consisten de dos a diez azúcares simples se llaman oligosacáridos, y los que tienen un número mayor se llaman polisacáridos.
Los azúcares son generalmente blancos y cristalinos, solubles en agua y con un sabor dulce,  se estudiaron ciertas sustancias como bebidas hidratantes, bebidas light, zumo de limón, la galactosa, fructosa, almidón, y sacarosa, y a cada  una de esas muestras  se les aplico los reactivos de molish, fehling, lugol, seliwanoff y azucares reductores, siendo estos los que nos permitían ver la reacción y notar la presencia de carbohidratos en cada una de las sustancias  analizar.


METODOLOGIA

Reacción de molish
Fehling A-B
Reacción de lugol
Reacción de seliwanoff
Azucares reductores
En los tubos de ensayos se  deposita las muestras indicadas  se le agrega  a cada uno el reactivo de molish  y luego un poco de ácido sulfúrico concentrado
Toma los tubos de ensayo   y deposita en ellos las muestras  a cada una se le agrega  una pequeña cantidad  de fehling A  y fehling B, lleva los tubos al baño María y observa si la reacción da positiva o negativa dependiendo del color
Este consiste en el  contacto de almidón  con el reactivo, se cogen las muestras en este caso  manzana, papa  y la zanahoria y se le agrega  unas gotas del Lugol   los cuales deberán tomar un tono oscuro  si las muestras son positivas
Se le agregan unas gotas de este reactivo a las muestras indicadas  y se lleva al baño María  hasta ebullición
Se toma la sacarosa  y se le añade  el ácido clorhídrico  se puso  a calentar   hasta hacerlo reaccionar, y se le agrega  (H2SO4) para llevarlo a un estado acido  se lleva al baño María y  se le realiza la prueba de fehling 


ANALISIS Y RESULTADOS


·         PRUEBA DE LUGOL:

RESULTADOS:
  • El almidón (papa, zanahoria y manzana) en contacto con el reactivo lugol (disolución de yodo y yoduro potásico) arrojo los siguientes resultados:
  • En la papa: tomo un color negro.
  • En la zanahoria: torno un color violeta oscuro pero en menor proporción.
  • En la manzana: no hubo un cambio de color.


ANÁLISIS:

  • Se reconoció que el método de la reacción de lugol se usa para identificar polisacáridos presentes en el almidón.
  •  Las muestras de la papa y la zanahoria dieron un resultado positivo en presencias de polisacáridos.
  •  La papa al tornar un color mas intenso demuestra mayor proporción de polisacáridos que en el caso de la zanahoria que obtuvo un tono menos intenso y en la manzana no se tiño porque no hay presencia de polisacáridos.


·         PRUEBA FEHLING:

RESULTADOS:

El reactivo fehling  A y fehling B se combinó con: una bebida hidratante, una bebida light,  zumo de limón, la galactosa,  fructosa,  sacarosa y el almidón, y dieron como resultados los siguientes:

           Antes del baño maría.
  • bebida hidratante: color azul oscuro.
  •  una bebida light: color azul oscuro.
  •   zumo de limón: color azul claro.
  •  galactosa: color azul oscuro.
  • fructosa: tono morado oscuro.
  • Sacarosa: color azul oscuro.
  • Almidón: color azul oscuro.



Después del baño maría.
·         
  • bebida hidratante: color rojo ladrillo. (+)
  • una bebida light: color rojo ladrillo. (+)
  • zumo de limón: color rojo ladrillo. (+)
  • galactosa: color rojo ladrillo. (+)
  • fructosa: color rojo ladrillo. (+)
  •  Sacarosa: color rojo ladrillo. (+)
  • Almidón: color azul. (-)
ANÁLISIS:

  • En esta prueba se determinó  si una bebida hidratante, una bebida light,  zumo de limón, la galactosa,  fructosa,  sacarosa y el almidón son azúcares reductores o no. 
  •  el resultado del almidón  nos indica una coloración azul determinando que esta solución es un azúcar no reductor debido a que la prueba salió negativa y que no se produjo la reducción.
  •   los resultados de las soluciones de azúcares reductores son: (bebida hidratante, bebida light, zumo de limón, galactosa, Fructosa y sacarosa), que nos indica una coloración rojo ladrillo a diferente nivel de coloración ya que esto se debe a la concentración de azúcar en cada solución, estableciendo que se produjo la reducción y que la prueba fue positivo.
  •  El resultado de la práctica es óptimo, conocemos que la experiencia con el reactivo de Fehling se fundamenta en el poder reductor del grupo carbonilo en las aldosas, pues tienen la estructura química abierta necesaria para actuar como agentes reductores, y en algunas cetosas ,lo que se evidencia con la formación de un precipitado rojo ladrillo.
  •  Determinamos  que la coloración que toman los precipitados dependen de la cantidad de reactivo que se use y por tanto dan un aspecto de buena o baja concentración, por lo que hablamos de una cantidad muy buena de azúcar.
REACCIÓN DE MOLISH

RESULTADOS:
·      
  •         bebida hidratante: formación de capaz: superior color rosa, intermedia anillo de color negro e inferior color amarillento. (+)
  •        una bebida light: formación de capaz: superior color transparente, intermedia anillo de color negro pero muy delgado e inferior color transparente. (+)
  •      zumo de limón: formación de capaz: superior color blanco, intermedia anillo de color negro e inferior transparente. (+)
  •    galactosa: formación de capaz: superior color transparente, intermedia anillo color negro e inferior color transparente. (+)
  •     fructosa: formación de capaz: superior color amarillento, intermedia anillo de color negro e inferior transparente. (+)
  •       Sacarosa: formación de capaz: superior tono marrón oscuro, intermedia anillo de color negro e inferior transparente. (+)
  •      Almidón: superior color transparente, intermedio anillo color negro e inferior color transparente. (+)
ANALISIS:
·         
  •     Al ser añadido el ácido sulfúrico  inmediatamente aparece un anillo violeta que separa al ácido sulfúrico, debajo del anillo, de la solución acuosa en caso positivo en presencia de carbohidratos y determinación de sacáridos.
  •      La sacarosa es un disacárido e hidrato de carbono compuesto lo que se obtiene por mayor un mayor anillo de carbohidratos.
  •      El zumo de limón contiene fructosa siendo este un monosacárido con presencia de carbohidratos pero en menor proporción que en la sacarosa.
  •     En el caso de la bebida light el anillo formado fue muy delgado lo que determina una menor proporción de carbohidratos que en las demás muestras. 
  •     La fructosa , la galactosa y la sacarosa fueron los azúcares usados que dieron un resultado positivo con el reactivo de Molish, a pesar de que la galactosa y la fructosa son monosacáridos y de que la sacarosa sea un disacáridos, esto hace que dicha clasificación se deba al tiempo que tarda en formarse el anillo color violeta oscuro casi negro ya que el ácido sulfúrico concentrado [H2SO4] permite que los glúcidos se deshidraten formando compuestos furfúricos por tanto diremos que como en nuestro caso las hexosas dan hidroximetilfurfural.
  •      La galactosa y la fructosa presentaron  la formación de  un anillo de color violeta en interface inmediatamente. Lo que nos indica que corresponde a un carbohidrato (monosacárido).
  •     La sacarosa  presentó en interface la formación de un anillo de color violeta después de un tiempo. Lo que nos indica que corresponde a un carbohidrato (disacárido). 
  •     Se determinó que la reacción de molish Se basa en la deshidratación de los carbohidratos por la presencia de ácido sulfúrico para producir un aldehído, que se condensa con 2
  •      Moléculas resultando una coloración violeta oscuro característico.
  •      En el caso del almidón ocurrió la visualización de un anillo lo que nos determina que se tiñen los carbohidratos y que es un polisacárido e hidrato de carbono complejo.

        REACCION DE SELIWANOFF:
    
       RESULTADOS:
·         
  •      bebida hidratante: color rojo salmón en mayor tiempo (+)
  •      una bebida light: color marrón oscuro (-)
  •      zumo de limón: color marrón. (-)
  •     galactosa: color marrón. (-)
  •     fructosa: color rojo salmón. (+)
  •     Sacarosa: color rojo salmón en mayor tiempo(-)
  •     Almidón: color rojo salmón. (+)

ANÁLISIS:
  •     Se logró determinar que la prueba de seliwanoff es una prueba química que se usa para distinguir entre aldosas y cetosas.
  •      Tanto las aldosas como las cetosas en presencia de acidos minerales y en un medio caliente sufren procesos de deshidratación, lo cual da como producto un anillo pentagonal de furfural o hidroximetilfurfural, según sea el monosacárido pentosa o hexosa, los furfurales se condensan dando una coloración roja salmón.
  •        Las cetosas se deshidratan más rápido que las aldosas, lo cual permite diferenciarlos.
  •     En la prueba de seliwanoff la fructosa  y la sacarosa al ser  cetohexosas dan un resultado positivo, en un tiempo más prolongado se efectúa  la hidrolisis acida en donde la sacarosa libera fructosa como es en el caso de la bebida hidratante que también da como resultado positivo siendo cetosas.
  •      En el caso de la bebida light al no contener sacarosa nos arroja un resultado negativo con un color marrón siendo aldosa.
  •     El zumo de limón contiene fructosa pero en muy poca cantidad y ese se une con la galactosa otro monosacárido y ya que no dio un color rojo salmón se deduce un resultado negativo en presencia de aldosa.
  •        La galactosa y el almidón  dio un resultado negativo siendo unas aldosas.


         PRUEBA DE AZUCARES  NO REDUCTORES
        

        RESULTADOS:
  •         Al ser añadido el ácido clorhídrico a la sacarosa se tornó un  color verdoso claro.

       ANÁLISIS:

  •       En la prueba de inversión de la sacarosa el ácido clorhídrico rompe los enlaces glucosidicos de la sacarosa separándola en glucosa y fructosa.
  •      Los ácidos clorhídricos y sulfúricos vuelven derivados furfurilicos a los monosacáridos, también rompen los enlaces glucosidicos de los disacáridos

     
      

       ANEXOS


             Feling 
  1.              Almidon
  2.              Fructosa
  3.              Sacarosa
  4.              Galactosa
  5.              Limon
  6.              Ligh
  7.              Hidratante

    En el reacctivo de fehling se obtuvieron  en la mayoría de las muestras una prueba positiva a excepción del 7 (almidón) que dio negativo con una tonalidad azul.



           Reactivo de Lugol      

     En la prueba de lugol se notó el cambio de color más intenso en la papa demostrando mayor proporción de polisacáridos, en la zanahoria se notó un tono menos intenso  y en la manzana no hubo presencia de polisacáridos.

         Reactivo de molish


Hidratante 




               Ligh


            Zumo de limon



               Sacarosa

                   
               Fructosa


                   Almidon


    Como se puede observar en la muestra de molish se notó un anillo, pero si analizamos las evidencias se puede notar que en la bebida light se muestra una formación de anillo más delgada que en las otras.

         
      Reacción de seliwanoff
     En el reactivo de seliwanoff  dieron positivo 1 (la debida hidratante) 5(sacarosa)  6 (fructosa)   con una tonalidad de ladrillo intenso.

         
        Reacción de azucares
v      


               CONCLUSIONES.
  

  •    Los carbohidratos al poseer en su estructura aldehídos o cetonas,  presentan un comportamiento químico ligado a los grupos funcionales de estos, como por ejemplo la capacidad de oxidarse con agentes oxidantes suaves como el reactivo de fehling o de Tollens o la capacidad de formar osazonas, además esta clase de reacciones permiten diferenciar monosacáridos de disacáridos como la sacarosa.

  •    Comparamos las características obtenidas con la teoría establecida, ya que si se obtuvo el color rojo como indica la teoría,lo que pudimos comprobar que la sacarosa al igual que la fructosa tiene el grupo carbonilo no se encuentra  libre, sino en un carbono secundario.
  •      Mediante la reacción de Seliwanoff se identificó los diferentes azúcares dándonos una reacción positiva la fructosa ya que es una cetosa y la sacarosa, esta ultima esta formada por un monosacarido fructuosa que es una cetosa, mientras que obtuvimos una reacción negativa en la galactosa y  lo que nos da a identificar que estos azúcares son aldosas.


BIBLIOGRAFIA